Кролики и наркоз - декоративные и карликовые кролики. Анестезия кролику I Допустимые препараты

При оказании лечебной помощи пушному зверю, необходимо укрепить его в таком положении, чтобы животное не причинило вреда себе, ассистенту и лечащему врачу. Методы фиксации зверя должны обеспечивать оптимальный доступ к по­лю операции.

Зверя ловят при помощи специальных ловушек, щипцов, сач­ков или утепленных рукавиц, дающих возможность обслуживаю­щему персоналу уберечь себя от зубов и когтей зверя (рисунки 1, 2).

Пойманному и надежно удерживаемому в руках человека зверю фиксируют рот мягкой марлевой повязкой, которую накладывают вокруг челюстей и завязывают на спинке носа. У соболей и но­рок, лицевая часть которых более короткая и коническая, такую тесьму укрепляют предварительно вложенной поперек рта за клыками круглой гладкой палочкой; зажатая между челюстями па­лочка удерживается верхними и нижними клыками и одновремен­но сама фиксирует наложенную сзади нее тесьму.

Для фиксации норок при взятии проб крови для исследова­ния, проведении массовых профилактических вакцинаций, а также для других целей исполь­зуют сетчатую цилиндрическую ловушку с отверстием с одного края. Сетчатая ловушка для самцов размером 35 × 9 см, для са­мок 30 × 7 см (рисунок 3).

Ловушку подставляют к лазу домика, за­гоняют в нее норку так, чтобы голова ее была в глухом конце ловушки, а к задним конечностям животного был доступ.

В зависимости от места операции животное помещают на обыкновенный стол в спинном, брюшном, боковом или удерживают в стоячем, положении.

Иногда звери, на которых наложены фиксирующие повязки, сильно беспокоятся. Таким животным предварительно следует сделать наркоз или ввести промедол , амина­зин или другие анальгезирующие или транквилизирующие средства.

У щенков лисиц и песцов можно открывать рот, надавливая двумя пальцами руки (большим и средним) через щеки на межчелюстные пространства губ вблизи че­люстного сустава. При этом ладонь руки кладут на лоб животного, а пальцами охватывают его череп. Достаточно легко нажать пальцами на межчелюстное пространство, и щенки открывают рот. При более длительных манипуляциях в ротовой полости и при зондировании желудка, рот фиксируют в открытом положении с помощью деревянного зевника для мелких животных И.Г. Шарабрина с круглым отверстием в центре или с помощью резиновой пробки, укрепленной на металлическом стержне.

Анестезия (местное обезболивание)

(Anaesthesia s. analgesia)

Для местного обезболива­ния применяют новокаин в виде 0,25…2%-х растворов. Доза для соболей, норок, лисиц и песцов – 0,04 г на кг массы.

Новокаин применяют: для поверхностного обезболивания конъюнктивы, слизистых оболочек носа, рта, прямой кишки в форме более концентрированных водных растворов и мазей; для инфильтрационной анестезии при ампутации конечностей, хирургических вмешательствах в глубоких тканях и при полостных операциях (в сочетании с аналгезирующими и нейроплегическими средства­ми в форме водных (0,25…0,5%-х) растворов; для периневральной проводниковой анестезии в более концентрирован­ных (1...2%-х) водных растворах; у лисиц и песцов для спинномозговой (люмбарной) анестезии в 0,5…1%-х растворах (доза 0,01 г новокаина на кг массы).

Иглу вводят по медиальной линии перпендикулярно меж­ду остистыми отростками двух последних поясничных позвонков. Соблюдается строгая асептика. В зависимости от количества вве­денного раствора и распределения его по спинномозговому кана­лу область обезболивания может распространиться до переднего пояса конечностей.

Растворы новокаина применяют также с целью проведения патогенетической терапии (по методу А.В. Вишневского), при плохо заживающих язвенных процессах, флегмонах, маститах, отеках, заболеваниях органов грудной, брюшной и тазовой полостей. В зави­симости от способа применения различают короткую блокаду (местную) и отдаленную. При короткой блокаде раствор ново­каина (0,25…0,5%-й) с добавлением бензилпенициллина и стрептомицина инъецируют вокруг очага поражения или вводят под него, при этом ткани инфильтрируют обильно. В некоторых случаях блокаду повторяют через 3...4 дня. К отдаленным блокадам, используемым в звероводческой практике, относятся: а) шей­ная вагосимптоматическая блокада – введение анальгезирующего раствора в область расположения блуждающего и симптоматиче­ского нервов на шее и б) поясничная (паранефральная) новокаиновая блокада – введение раствора новокаина с добавлением стрептомицина в область почечного нервного сплетения. Последняя широко используется при заболеваниях органов брюшной и тазовой по­лостей.

При поясничной блокаде зверя фиксируют два человека, при­чем один держит за передние конечности и голову, а второй – за задние и одновременно поддерживает животное одной рукой под живот для предупреждения резких движений. Иглу вводят у лисиц и песцов с левой стороны за поперечнореберным отростком второго поясничного позвонка (между поперечными отростками второго и третьего по­ясничных позвонков); а справа за поперечнореберным отростком первого поясничного позвонка (между первым и вторым позвон­ками), отступя от средней линии (остистых отростков) поясницы на 2…2,5 см. У соболей и норок иглу вводят на уровне второго поясничного позвонка с левой стороны и на уровне первого позвон­ка с правой стороны, отступя от средней линии поясницы на 1…1,5 см. Почки у пушных зверей можно ощутить путем пальпации через брюшную стенку, что может служить ориентиром для определения места введения иглы. В указанном месте иглу вводят в мягкие ткани до соприкосновения ее с поперечным отростком, а затем смещают ее в ту или другую сторону, чтобы она прошла между указанными выше поперечными отростками, и погружают на глу­бину 0,5…0,8 см у лисиц и песцов и на 0,3…0,5 см у соболей и норок, после чего вводят раствор.

Для предупреждения осложнения инфекцией, в 0,25…0,3%-й раствор новока­ина добавляют стрептомицин в небольших количествах. Доза раствора новока­ина на взрослую ли­сицу или песца – 10…20 мл, на взрослую норку или соболя – 5…7 мл при одностороннем введении; при двустороннем применении эту дозу делят пополам. В случае необходимости блокаду повторяют через 4...5 дней.

Наркоз (Narcosis)

При фиксации и лечении больных зверей нередко возникает необходимость обезболивания или наркоза.

В звероводческой практике используют три вида обезболива­ния: общий наркоз, местную или локальную , и спинномозговую анестезию . Последний вид обез­боливания применяют реже.

В зависимости от сложности опе­рации, состояния, вида и возра­ста зверя применяют наркотиче­ские, анальгезирующие, транкви­лизирующие средства, или соче­тание их и местное обезболива­ние.

Обезболивание достигается посредством инъекции 0,5%-го раствора новокаина.

Наркоз применяют: в фор­ме ингаляции, через рот или прямую кишку, слизистые оболочки пищеварительного тракта, в форме внутривен­ных вливаний, внутрибрюшинно или внутримышечно.

Общий наркоз применяют в основном при полостных операциях. В последние годы в практику звероводческих хозяйств успешно внедрены нейроплегические средства, в частности: хлороформ , эфир медицинский , хлоралгидрат и производные барбитуровой кислоты – амитал (барбамил), этаминал (нембутал) , гексенал , тиопентал натрия , аминазин или мепазин . Каждое средство можно использовать как отдельно, так и в определенной смеси или для комбинационного наркоза.

Для внутривенного глубокого хирургического наркоза пушных зверей пригод­ны лишь барбитураты кратковременного действия (тиопентал , гексенал , амитал , этаминал ).

Аминазин и мепазин расслабляют скелетную мускулатуру, хорошо уменьшают болезненность, обладают успокаивающим действием. При повышении дозы препарата наступает сон. Ориентировочно дозы для лисиц и песцов составляют (внутримышечно или подкожно) 0,05…0,075 г (2...3 мл 2,5%-го раствора) и более. В случае неэффективности, доза препарата во время операции увеличивается до прекращения сокращений мышц брюшной стенки (отсутствие реакции на болевой раздражитель). Доза аминазина для норок, хорьков и соболей – в 2...3 раза меньше.

В последнее время у зверей всех видов применяют в сочета­нии анальгезирующие (промедол , морфин , омнопон ) или транкви­лизирующие средства (аминазин , мепазин – производные фенотиазина) с местноанестезирующими веществами (новокаин , дикаин ).

Наркоз лисиц и песцов . Наиболее эффективными средствами для наркоза лисиц и песцов следует считать хлороформно-эфирную смесь , хлоралгидрат в чистом виде или в виде комбинаций с нембуталом или амиталом , нембутал , амитал , тиопентал натрия и гексенал в чистом виде. Хлороформ и эфир употребляют для нар­коза лисиц различного возраста и массы в соотношении 1:1 в дозе от 15 до 30 мл. Смесь вводят животному с помощью ингаляционной маски. При использовании метода ингаляции следует строго следить за со­стоянием зверя, его пульсом и дыханием. Сон у лисиц обычно на­ступает после предварительного периода возбуждения, длящегося не более 5…10 мин. Ингаляционный наркоз может вызвать пара­лич дыхательного центра (в период наркоза). В посленаркозный период иногда возникают отек легких и пневмония.

При остановке дыхания применяют искусственное дыхание, под кожу (а лучше внутривенно) вводят лобелин, возбуждающий ды­хательный центр, в дозе 0,25 мл 1%-го раствора, или кордиамин (коразол ), возбуждающий сосудодвигательный центр, в дозе 0,25 мл 0,5%-го раствора взрослой лисице.

Посленаркозные осложнения (отек легких и пневмонию) лечат симптоматическими средствами.

Хлоралгидрат вводят лисицам и песцам в прямую кишку в виде 10%-го водного раствора, предварительно добавив в него 2% крахмала . Раствор вводят шприцем с резиновой канюлей длиной 15 см или резиновой спринцовкой из расчета 0,3…0,5 г сухого вещества на кг массы животного. Перед введени­ем раствора прямую кишку освобождают от каловых масс. Наркоз наступает через 15…20 мин и длится до 2...2½ ч.

Лучшие результаты получены от метода, при котором использу­ют этаминал (нембутал ) или амитал (барбамил ) в комбина­ции с хлоралгидратом . Для этого за 1 ч до операции лисице или песцу вводят через рот корнцангом желатиновую капсулу, содержащую амитал или этаминал , из расчета 0,05...0,06 г амитала или 0,05...0,06 г этаминала на кг массы зверя. Эти средства в указанных дозах вызывают у зверей неполный нар­коз (базисный). Затем перед операцией зверю вводят в прямую кишку 10%-й водный раствор хлоралгидрата в количестве 6…15 мл, в зависимости от возраста и массы животного (0,2...0,3 г сухого хлоралгидрата на кг массы). Этот метод обеспечивает наркоз на 2...3 ч. Он почти не дает осложнений и заслуживает внимания при внутриполостных операциях.

Амитал и этаминал , применяемые для наркоза каждый отдель­но, вводят через рот в виде порошка, заключенного в желатино­вые капсулы, из расчета 0,07...0,08 г на кг массы животного. Эти же препараты в виде натриевых солей можно применять внутримышечно (в бедро) и внутривенно (v. saphena ) в виде 5…2,5%-х асептически приготовленных свежих водных растворов в дозе 1,5…2 мл внутримышечно или внутривен­но – до 1,5 мл 5%-го раствора на кг массы зверя.

Гексенал лисицам и песцам вводят внутривенно в виде 5%-го водного раствора в дозе 0,04...0,05 г, либо через прямую кишку в дозе 0,075 г сухого веще­ства на кг массы зверя.

Тиопентал применяют только внутривенно в 2,5%-м растворе из расчета 1 мл раствора на кг массы, но не более 0,25 г сухого ве­щества каждому крупному зверю – лисице и песцу. Подкожно и внутримышечно тиопентал не применяют, так как он вызывает некроз кожи.

Внутривенно растворы гексенала , амитала , этаминала и тиопентала необходимо вводить очень медленно, не более 1...2 мл в 1 мин, так как быстрое введение может вызвать оста­новку дыхания и нарушение кровообращения (явления коллапса). При явлениях коллапса рекомендуется внутривенно или внутри­мышечно ввести кордиамин (коразол ), лобелин , кофеин ; внутри­венно – 40%-й раствор глюкозы ; подкожно – камфорное масло .

Наркоз соболей и норок . При использовании средств для наркоза соболей необходимо быть весьма осторожным в выборе препаратов, дозировки и способа введения вследствие видовой осо­бенности этих пушных зверей – их повышенной нервной возбуди­мости.

Допустимы к применению морфин в комбинации с атропином , хлоралгидрат , тиопентал и амитал . Морфин применяют в виде 2…4%-х водных растворов под­кожно в разовой дозе соболю 0,01 г на кг мас­сы. Для снижения его токсического действия обязательно добав­ляют атропин (1%-й раствор в дозе 0,002 г на кг массы зверя). Введенные препараты вызывают глубокий продолжительный сон.

Хлоралгидрат вводят в прямую кишку при помощи спринцовки или шприца с резиновой канюлей в виде 10%-го раствора на 2%-й крахмальной слизи (0,5…0,7 г, слабым животным не выше 0,5 г, на кг массы).

Амитал задают животному внутрь в виде порошка в дозе 0,07…0,1 г на кг массы. Порошок задают осторожно, чтобы не вызвать аспирационного бронхита или пневмонии.

Менее опасно вводить натриевую соль амитала в виде 5%-го водного раствора внутримышечно в бедро из расчета 1,5…2 мл на кг массы зверя. Этот метод наркоза у соболей наиболее эффективен.

Тиопентал применяют в форме 2,5%-го раствора внутри­венно (v. saphena ) в дозе 1…1,5 мл раствора на кг массы. Вво­дят осторожно и медленно. Если наркоз не наступит, рекоменду­ется ввести дополнительно 1,25%-й раствор тиопентала до 1 мл на кг массы зверя с теми же предосторожностями. При под­кожном введении тиопентала возникает отек подкожной клетчат­ки с последующим некрозом кожи.

Для наркоза норкам применяют амитал или этаминал из расчета: через рот в порошке – 0,05…0,065 г; внутримышечно в виде 5%-го водного раствора натриевых солей – 1…1,5 мл на кг массы.

Растворы тиопентала и гексенала вводят и в брюшную полость. Для этого используют 5%-й раствор гексенала из расчета 0,8…1 мл на кг массы зверя; 2,5%-й раствор тио­пентал натрия – 0,8…1 мл на кг массы животного. Перед введением препаратов для наркоза необходимо путем легкого массажа мочевого пузыря удалить из него мочу. Иглу вводят в подвздошную область, животное фиксируют приподнятой задней частью тела.

При хирургических вмешательствах у пушных зверей применя­ют анальгезирующие средства – промедол внутримышечно или подкожно в виде 1...2%-го раствора из расчета соболю и норке – 0,002...0,003 г, лисице и песцу – 0,005…0,01 г на зверя в сочетании с местноанестезирующими веществами (0,5...1%-й раствор новокаина ) или нейроплегические средства – аминазин и мепазин в 0,5…2,5%-м растворе в сочетании с 0,5…1%-м раствором новокаина .

Аминазин и мепазин вводят внутримышечно, реже внутривенно в дозе 0,005...0,075 г на голову взрослому соболю или норке и 0,0125…0,02 г – на голову взрослой лисице или песцу. При этом необходимое количество аминазина или мепазина разводят в 1...2 мл 0,25…0,5%-го раствора новокаина; для внутривенного введения эти препараты применяют в минимальных дозах и разводят в 5…10 мл 20…40%-го раствора глюкозы или изотонического раство­ра хлористого натрия.

Кастрация - решение проблемы плодовитости кроликов. Кому не известно расхожее выражение «плодятся, как кролики»! Это животное стало практически символом плодовитости, о чем, конечно, должны не забывать и хозяева декоративных ушастиков, заводя у себя декоративный вариант домашних питомцев.

Чтобы избежать многих нежелательных явлений, специалисты рекомендуют вовремя стерилизовать или кастрировать их . Чем это грозит или, наоборот, не грозит кролику и нужно ли это делать?

Этой операции можно подвергнуть и самку, и самца. В первом случае крольчихам перевязывают маточные трубы, искусственно создавая их непроходимость, а кроликам «мужского пола» – семенные протоки или же удаляют фрагмент их.

То есть по большому счету грубого вмешательства в кроличий организм не происходит: половые органы не удалены, работают, как говорится, в штатном режиме, продолжая вырабатывать гормоны. Половой инстинкт у особей не нарушается, не снижается, они способны спариваться. Но цель самой процедуры – не позволить кроликам бесконтрольно размножаться – достигнута.

После стерилизации питомец может похудеть или стать агрессивным. Может ли стерилизация как-то повлиять на кроличий организм? Из-за естественной потребности в продолжении рода, да еще при нормально функционирующей половой системе, стерилизованные кролики подвергаются крупному гормональному сбою.

Организм животного подвергается стрессу, следствием которого могут стать серьезные нарушения здоровья, в частности проблемы с мочеполовой системой. Бедный питомец может как бы без видимых причин похудеть, отказываться от еды, в его поведении появляются элементы агрессии даже по отношению к хозяевам.

Кастрация: за и против

Под кастрацией подразумевается операция по полному удалению органов размножения, т.е. вследствие ее крольчихи лишаются яичников (частичная кастрация) или их же с маткой вместе (полная), а у самцов удаляются оба яичка.

Если стерилизация устраняет лишь функцию размножения со всеми вытекающими отсюда гормональными последствиями, то кастрация гормональных проблем в кроличьем организме не создает.

Минусы

Надо признать, что подобное хирургическое вмешательство при множестве плюсов, о которых поговорим ниже, имеет и некоторые малоприятные моменты:

• как и любая операция, это травмирование и стресс (как для питомца, так и для хозяина);
• денежные траты;
• дополнительный уход.

Плюсы

Несмотря на некоторые «против», специалисты, отвечая на вопрос «обязательно ли кастрировать декоративных кроликов?», утверждают, что для ушастиков обоих полов кастрация является наилучшим выходом. За – очень много доводов:

В каком возрасте делать

Нередко случается, что кастрация должна быть произведена уже немолодому пушистику по состоянию здоровья. Однако ветеринары считают, что лучше это сделать когда кролик еще молод, здоров и энергичен.

Стерилизацию следует проводить, когда питомцу исполнится полгода. Крольчиха достигает половозрелого возраста около 4-х месяцев от роду, и в принципе операция уже возможна. Однако более безопасным считается 6-месячный возраст.

Показатель для самцов – опущение яичек в мошонку. Это тоже происходит примерно в том же возрасте – 3,5-4 месяца.

Раньше делать такую операцию не стоит: мало того, что это технически сложнее, так еще и непредсказуемо для здоровья кролика.

Не возьмется «доктор Айболит» и за кастрацию старого кролика. По статистике, вероятность неблагополучного исхода операции с возрастом увеличивается. И даже пациента, перевалившего двухлетний возрастной рубеж, уже следует подвергнуть тщательному обследованию с проведением анализов.

Если кролику больше 4-х лет, то вероятность его гибели значительно выше, чем у 6–9-месячного его собрата.

Когда еще нельзя?

Если домашний питомец перебирает с весом, операцию по кастрации ему проводить не станут – пока не войдет в норму.

Так же поступят и при наличии каких-то заболеваний – сначала пушистого пациента надо вылечить.

Как происходит операция

Наркоз. Операционные процедуры для самцов и самок отличаются. У кроликов полностью удаляют семенники. Это можно совершить, сделав один или два надреза.

В первом варианте через надрез удаляются оба семенника, во втором – надрезы делаются над каждым из них, и органы удаляются по отдельности. Проходит все это под местной анестезией.

Разрезы, обработанные антисептиком, могут оставаться открытыми. «Закрытый» вариант предполагает наложение швов или нанесение хирургического клея.

Операция у самки более сложная. У крольчихи удаляют все детородные органы, и проведение такого вмешательства требует применения наркоза. После удаления ушивают и кровеносные сосуды, которые эти органы питали, и накладывают закрывающие разрез швы.

Если вас волнует качество и влияние наркоза на оперируемую питомицу, надо заранее «провести мониторинг» ветеринарных лечебниц, изучить отзывы хозяев, столкнувшихся с такой проблемой, и выбрать специалиста, у которого уже есть богатый опыт лечения, в том числе и хирургического, декоративных кроликов.

Операция: до и после

Перед ответственным моментом следует уточнить в клинике:

• чему будет подвергнут ваш любимец – стерилизации или кастрации;
• какие анализы нужно сделать дополнительно;
• какие медикаментозные препараты или приспособления могут понадобиться в послеоперационный период;
• как подготовить кролика к операции.

Не стоит держать питомца полсуток на «голодной диете». Для постоянно жующего животного это стресс. Надо просто уменьшить обычную дозу.

…Но вот все необходимые манипуляции по предотвращению кроличьего «демографического взрыва» завершены, и теперь наступает ответственный период – послеоперационный уход. О том, как его осуществлять, надо непременно выяснить еще в ветеринарной клинике.

Непременно поинтересуйтесь у доктора, какого поведения можно ожидать от прооперированного кролика, чтобы не пугаться «ненормальностей»; как должно выглядеть место разреза и послеоперационный шов; как их обрабатывать.

Надо быть готовым к тому, что в первые послеоперационные часы кролика будет пошатывать, и вести себя он может весьма непривычно.

Поместить его надо на чистую жилплощадь и обеспечить комфорт, покой и питье. Лоток тоже должен быть чистым и заполнен свежим наполнителем (как вариант – клочками бумаги – вполне нейтральный материал).

Еду можно предложить через несколько часов, но не давать объедаться хотя бы в первые три дня.

Проконсультируйтесь у врача как ухаживать за любимцем после операции. Наблюдайте как за аппетитом, так и за мочеиспусканием и стулом питомца. Если вдруг заметили, что он не ест, что уже долго не мочится, или у него отсутствует стул, или, наоборот, имеет место понос, – это повод обратиться к специалисту.

Прооперированное место следует периодически обследовать. Шов должен быть сухим, чистым. У кролика нередко возникает желание погрызть швы – надо каким-то образом обезопасить их, несмотря на активное неприятие питомцем всяческих защитных бандажей и воротников.

Если шов «чувствует себя» нормально, его не надо ничем обрабатывать. А вот обезболивающее кролику, а особенно крольчихе, отнюдь не помешало бы. Боль может замедлить послеоперационную реабилитацию животного, мешая как его питанию, так и личной гигиене.

Несмотря на то, что через пару дней кролик потребует активного движения по комнате, пока не позволяйте ему этого: может быть задето и травмировано место разреза.

Пусть вас не волнует, если заметите припухлость мошонки. Если это наблюдается не больше двух недель, то считается нормой.

После кастрации кроликов нельзя поселять вместе с крольчихами «детородного» возраста. Дело в том, что у прооперированного самца сперма, оставшаяся в семявыводящих протоках, еще долго сохраняет свои свойства, а уровень тестостерона не сразу снизится до «нуля», потому кролик еще в течение 3-4 недель будет предпринимать попытки спаривания, и крольчиха может забеременеть.

Цена вопроса

Операция по стерилизации или кастрации, естественно, процедура платная. То, сколько она стоит, отличается в разных городах и даже в разных клиниках. В частных ветучреждениях цена, как правило, выше, чем в государственных.

Кастрировать самца дешевле, чем самку. Это еще может зависеть и от породы ушастика. Нередко она равна или превышает цену самого «пациента». Стоимость только собственно хирургической манипуляции начинается от 2000 рублей . Надо добавить еще цену анестезии, расходных материалов, медикаментов, капельницы, а также дополнительных исследований – УЗИ, анализов, эхо- и электрокардиограмму. Не исключено, что придется на какое время оставить домашнего любимца в стенах клиники.

Не следует сбрасывать со счетов и такие статьи расходов как транспортировка туда–обратно, предварительная консультация ветеринара и его же итоговый осмотр, а также покупка защитных приспособлений (бандажа/воротника).

Если вы счастливый обладатель пары-тройки декоративных кроликов, то во избежание проблемы кроличьего перенаселения должны заранее непременно решить для себя, как поступить с половыми интересами своих питомцев и какой из выходов вам покажется более гуманным – стерилизация или кастрация, изучив советы и отзывы специалистов и коллег по хобби.

Разина А.В., Фролова А.И., Сергеев М.А.
ФГОУ ВПО «Казанская государственная академия ветеринарной медицины им. Н.Э.Баумана»

Расширение видового спектра животных, содержащихся в домашних условиях (декоративные кролики, крысы, хомячки, хорьки и др.), и наличие у них хирургической патологии требует разработки надежного обезболивания при выполнении оперативных вмешательств различной продолжительности и сложности с минимальным влиянием на гомеостаз.

Материалы и методы

Опыты проведены на 15 кроликах в возрасте б месяцев, которые были разделены по принципу аналогов на 3 группы (по 5 животных в каждой).

Животным первой группы для премедикации вводили 2%раствор ксилозина гидрохлорида (рометара) внутримышечно в дозе 4.0-6,0 мг/кг массы, а затем внутривенно в краевую вену уха вводили 1 % водную эмульсию пропофола (дипривана) из расчета 5,0-7,5 мг/кг массы тела.

Животным второй группы вводили внутривенно золетил-50 в дозе 6,6 мг/кг массы

Животным третьей группы вводили внутримышечно рометар в дозе 4,0-6,0 мг/кг, а через 20 минут внутримышечно - золетил-50 в дозе 5-10 мг/кг.

Показатели температуры тела, пульса и дыхания, характеризующие общий клинический статус животных, начинали определять до введения анестетиков, а затем после: через 10, 30, 60 минут, 3 и 24 часа.

При определении глубины анестезии, учитывали высоту амплитуды экскурсии грудной клетки, цвет слизистой оболочки ротовой полости и языка, тонус жевательных мышц, экстензоров и флексоров суставов конечностей, оценивали степень дилатацпи зрачка, выраженность реакции зрачка на изменение освещенности и корнеального рефлекса (прикосновение к конъюнктиве, роговице), степень кожной болевой чувствительности (уколом иглой кожи у корня хвоста, внутренней поверхности бедра, мочки носа), условные реакции.

Частоту сердечных сокращений определяли по формуле, используя запись ЭКГ. Число ударов в минуту равно 3000, деленное на расстояние между двумя комплексами в мм (Мартин М..2004). Запись осуществляли во втором отведении со скоростью движения бумаги 50 мм/с с игольчатых электродов, закрепленных на грудных конечностях в области плеча, а на тазовых - в области бедра.

Результаты исследований.

1 группа: Через 5 минут после введения рометара у кроликов первой группы отмечалось сужение зрачка, животные опускали голову. Наблюдались легкая седация и умеренное снижение болевой чувствительности. Но даже при попытке придать им боковое положение животные оказывали сопротивление.

Через 10 минут после премедикации седация усиливалась, однако на некоторые манипуляции, связанные с фиксацией в боковом положении, животные оказывали достаточно активное сопротивление.

Через 5 минут после внутривенного введения дипривана у кроликов наблюдалась хорошо выраженная релаксация мышц конечностей, но корнеальный рефлекс и болевая чувствительность сохранялись, что исключало возможность выполнения даже малых хирургических вмешательств. Животные начинали самостоятельно передвигаться уже через 30-35 минут после введения пропофола.

У животных этой группы установлено кратковременное незначительное повышение температуры тела, а после введения дипривана началось снижение: через 5 минут на 0,8°С, через 30 - на 2,2°С, а через час на 2,3°С (Рис.1).

У кроликов этой группы после премедикации рометаром отмечалось урежение частоты сердечных сокращений до 156 уд/мин, что на 35% ниже исходных данных, которое продолжалось и после введения пропофола, а через 30 минут появилась тенденция к постепенной нормализации данного показателя (Рис.2).

Описанные изменения сопровождались и урежением дыхания: через 15 минут после премедикацип на 10 дых. дв/мин, через 5 минут после введения дппривана на 18 дых. дв/мин по сравнению с первоначальным значением, которое составляло 70 дых. дв/мин.. Через 30 минут зарегистрировано 48 дых.дв./мин. и лишь через час появились признаки начавшегося восстановления частоты дыхания (56 дых. дв./мин.) (Рис.3).

Проведенные в дальнейшем исследования показали, что температура тела, частота пульса и дыхания через 24 часа после попытки введения кроликов в состояние обшей анестезии данным способом не отличались от полученных до начала введения препаратов.

2 группа: После внутривенного введения 5% раствора золетпла кроликам второй группы наблюдали мгновенную релаксацию мышц. Корнеальный рефлекс и болевая чувствительность через 1 минуту отсутствовали, но уже через 5 минут после появились вновь. Через час восстановилась двигательная активность кроликов, а через 1,5 часа они уже могли самостоятельно передвигаться.

При изучении показателей, характеризующих клинический статус подопытных кроликов этой группы, установлено понижение температуры тела, которое началось через 5 минут после введения золетила и через 30 температура тела была на 1,2°С, а через час на 1,6°С ниже исходного уровня (Рис.1).

После введения препарата регистрировали кратковременное учащение пульса- через 10 минут на 11 уд/мин., которое сменилось его урежением (на 28 уд/мин. меньше исходного показателя) (Рис.2).

Все описанные изменения сопровождались снижением количества дыхательных движений. Спустя 30 минут после введения раствора золетила глубина и частота дыхания начали восстанавливаться, но первоначального уровня, как и все другие показатели, достигли через сутки (Рис.3).

3 группа: После введения рометара все изменения в состоянии животных третьей группы были аналогичны изменениям, обнаруженным у кроликов первой группы.

Через 5 минут после внутримышечного введения золетила наступала полная релаксация мышц, отсутствовали корнеальный рефлекс и болевая чувствительность, зрачок расширялся.

В среднем по группе через 30 минут корнеальный рефлекс и болевая чувствительность восстанавливались. Через час животные пытались вставать, а самостоятельно передвигаться начинали через 1,5 часа после введения золетила. Отсутствие болевой чувствительности в течение 30 минут позволяет выполнить такие операции, как овариогистерэктомия самок, кастрация самцов, ушивание ран и др.

После введения золетила у кроликов начиналось снижение температуры тела, которая через 10 минут была на 0,4Т, через 30 минут на 1,4°С, а через час на 2,5°С ниже исходного значения (Рис.1).

Наблюдавшееся после введения рометара урежение пульса, после введения золетила сменялось его постепенной нормализацией (через 30 минут - 172 уд/мин.), после чего вновь наблюдалась брадикардия (155 уд/мин через 1 час после начала введения кроликов в состояние общей анестезии) (Рис.2).

Описанные изменения сопровождались урежением дыхания. Количество дыхательных движений через 30 минут после введения золетила становилось минимальным (38 дых.дв/мин). Затем количество дыхательных движений постепенно увеличивалось и через 3 часа составляло 76 в минуту (Рис.3).

Проведенные через 24 часа наблюдения показали, что общее состояние и пищевая возбудимость кроликов, а также поедаемость ими корма были хорошими. Данные температуры, пульса и дыхания не имели существенных отличий от установленных до начала применения изучаемых препаратов.

Таким образом, проведенные исследования позволяют считать наиболее оптимальным выбор метода, проводившегося у животных третьей опытной группы: общая анестезия кроликов с применением рометара для премедикации, а на его фоне - золетила в указанных дозах.

журнал "Ветеринарная клиника" №1 2008

УДК 619:636.92:615.211

Инъекционные препараты и их сочетания, используемые для анестезии кроликов

Инъекционные препараты используют для введения кроликов в анестезию при проведении различных диагностических и лечебных процедур. Их применение возможно как самостоятельно, так и перед ингаляционными препаратами. Для инъекционной анестезии, в отличие от ингаляционной, не требуется специального оборудования, по этой причине многие ветеринарные врачи вынужденны использовать этот метод. В настоящее время чаще используются различные сочетания препаратов для инъекционной и ингаляционной анестезии.

Накопленный опыт свидетельствует, что многие средства, применяемые для седации, анестезии и анальгезии можно использовать и для кроликов, но эффективные и безопасные дозы препаратов, их фармакодинамика, применение комбинаций препаратов, имеет значительные особенности. Ниже описываются некоторые препараты и их сочетания, действие которых на организм кроликов изучено и которые могут представлять интерес для ветеринарных врачей в нашей стране.

Ацепромазин (Acepromazine maleate) - производное фенотиазина, оказывает угнетающее воздействие на центральную нервную систему. Это ингибитор допамина, альфа-адренергический блокатор со слабой антимускариновой активностью. Основным при использовании ацепромазина в ветеринарии является его транквилизирующий эффект, к дополнительным, относят противоаритмический эффект и спазмолитическое действие. Он обычно используется для премедикации у животных многих видов. Ацепромазин оказывает гипотензивное действие и не обладает анальгетической активностью. Доза для кроликов в качестве транквилизатора 1 мг/кг в/м, эффект должен наступить в течение 10 минут и длиться 1-2 часа . Ghaffari MS et al., (2009) установили, что ацепромазин в обычной дозе уменьшает у кроликов продукцию слезной жидкости . У кроликов ацепромазин можно использовать для премедикации перед применением газового наркоза. Его можно применять в комбинации с буторфанолом для лучшего седативного эффекта.

Ксилазин (Xylazine) - является антагонистом альфа 2 -адренорецепторов, обладает у кроликов умеренным седативным и незначительным анальгетическим эффектом. Вызывает релаксацию скелетной мускулатуры посредством центрального действия. Раньше его использовали как монопрепарат или в комбинации с кетамином. Эта комбинация вызывает угнетение дыхания и сердечно-сосудистой системы, а в высоких дозах - сердечную аритмию и высокую смертность кроликов . Атипамезол — альфа адренергический блокатор - можно использовать как антагонист, для прекращения действия ксилазина.

Медетомидин (Medetomidine (Domitor, Pfizer) - более специфический альфа 2 агонист, чем ксилазин, с меньшим количеством побочных эффектов. Он значительно дороже и для кроликов требуются большие дозы, чем для животных других видов. Медетомидин можно использовать для премедикации или в сочетании с кетамином для хирургического наркоза . Медетомидин вызывает сужение периферических сосудов, изменяя кровоснабжение слизистых оболочек, так что ошибочно можно определить, что у животного цианоз. При использовании медетомидина часто развивается гипоксия, так что весь период анестезии необходимо применение кислорода .

Вызываемая медетомидином вазоконстрикция может препятствовать работе пульсоксиметра и венепункции для взятия крови и проведения инфузионной терапии. Этот препарат вызывает хорошее расслабление гортани, облегчающее эндотрахеальную интубацию. Он не вызывает угнетение дыхания и восстановление обычно происходит в течение трех часов. Восстановление можно ускорить применением атипамизола .

Буторфанол (Butorphanol) - синтетический антагонист-агонист опиатных рецепторов. Анальгетический эффект в 3-5 раз превышает действие морфина у человека и более чем в 30 раз у крыс . У кроликов буторфанол вызывает анальгезию и легкую седацию, не вызывает угнетение дыхания, если не использовать высокие дозы . Применяют для снятия послеоперационной боли в дозе 0,4 мг/кг перорально каждые 4-6 часов. В нескольких исследованиях было доказано, что использование высоких доз буторфанола вызывает меньший анальгетический эффект, чем более низких . Период полувыведения буторфанола у кроликов в дозе 0,5 мг/кг составляет 1,64 часа после внутривенного применения и 3,16 часа после подкожного . Буторфанол можно использовать для устранения угнетающего воздействия на дыхание µ- агонистов, таких, как фентанил, морфин и пефидин. Буторфанол (0,05 мг/кг подкожно или внутримышечно) используют в комбинации с медетомидином и кетамином для хирургического наркоза . Его также можно использовать в комбинации с ацепромазином для седации . Это сочетание вызывает вазодилятацию, что облегчает взятие крови и внутривенные инъекции.

Пропофол (Propofol) является гипнотическим препаратом короткого действия, не имеющим сходства с препаратами для общей анестезии, механизм действия не ясен . Как препарат, используемый для введения в анестезию, он имеет много преимуществ, включая глубокое гипнотическое воздействие и терапевтическую широту, быстрое начало действия и быстрое восстановление . Повторные дозы не накапливаются и пропофол можно использовать для поддержания анестезии путем длительной инфузии. Baumgartner CM et al. (2009) с этой целью применяли пропофол в дозе 4,0-8,0 мг/кг внутривенно, для поддержания анестезии 1,2-1,3 мг/кг/мин . Доза 5-14 мг/кг дает достаточно времени опытному анестезиологу для проведения интубации . После введения возможно кратковременное апноэ, а при применении высоких доз остановка дыхания.

Исследования Dikmen B. et al. (2010) показали, что использование пропофола предпочтительнее, чем кетамина у животных с почечной недостаточностью . Zhu T et al. (2008) установили, что пропофол усиливает печеночный кровоток . По данным Fudickar A. et al. (2009) введение пропофола вызывает такие негативные последствия, как острую брадикардию, асистолию, гиперлипемию и метаболический ацидоз, рабдомиолиз и миоглобинурию, которые описывают как Propofol infusion syndrome (PRIS). Пропофол не рекомендуется для длительной анестезии кроликов . В опытах Chen WH et al. (2006) пропофол оказывал прямое воздействие на сердце кроликов, вызывая резкое снижение артериального давления и брадикардию .

Кетамин (Ketamine) - диссоциативный препарат, который используют как единственный для введения в наркоз или в комбинации с другими препаратами для введения в наркоз и его поддержания. Кетамин вызывает симпатомиметический эффект, заключающийся в увеличении частоты сердечных сокращений, сердечного выброса и кровяного давления. Внутримышечное введение кетамина в дозе 40 мг/кг через 6,0 +/- 0,5 минут вызывало у кроликов анестезию продолжительностью 36,0+/-0,9 минут. Предварительное внутримышечное введение витамина С в дозе 30, 60 и 240 мг/кг сокращало время введения в наркоз и продлевало анестезию до 5,0 +/- 0,06 и 37,0 +/- 0,7; 4,0 +/- 0,5 и 39,0 +/- 0,6; 2,0 +/- 2,3 и 44,0 +/- 0,8 минут соответственно .

Исследования показали, что применение кетамина в дозе 10 мг/кг внутривенно у кроликов с травмой спинного мозга защищает его от ишемии и препятствует снижению уровня антиоксидантов .

Кетамин не устраняет окулярный, ларингеальный и глотательный рефлексы. Плохое мышечное расслабление делает кетамин непригодным для применения в качестве монопрепарата для анестезии перед хирургическими операциями, его применяют в комбинации с ксилазином или другими препаратами. Комбинации кетамин/диазепам и кетамин/ацепромазин увеличивают у кроликов внутриглазное давление .

Тилетамин/золазепам (tiletamine/zolazepame) - тилетамин - инъекционный анестетик, химически сходный с кетамином, золазепам - слабый диазепиновый транквилизатор. Фармакологическое действие комбинированного препарата сходно с кетамином и диазепамом. Пригодность тилетамин/золазепама для анестезии кроликов изучали Brammer DW et al. (1991). Внутримышечное введение 32 и 64 мг/кг препарата не вызвало анестезии и привело к нефротоксическому эффекту с развитием почечной недостаточности в течение 5 дней. Исследователи пришли к выводу, что этот препарат противопоказан кроликам . Нефротоксичность тилетамин/золазепама для кроликов установлена и в исследовании Doerning BJ. et al. (1992) . Данные о неспособности тилетамин/золазепама вызывать анестезию кроликов получены Dupras J. et al. (2001) . В то же время, необходимо учитывать невозможность легального использования многих препаратов, применяемых во всем мире, в нашей стране. Если ветеринарная клиника не оборудована аппаратурой для использования ингаляционной анестезии, и не имеет разрешения на использование кетамина, одним из немногих препаратов выбора в таком случае остается тилетамин/золазепам который необходимо комбинировать с другими лекарственными средствами.

Кетамин и ксилазин.

При минимально инвазивных процедурах продолжительностью не более 30-40 минут, кетамин в дозе 35 мг/кг в смеси с ксилазином 5 мг/кг вводят внутримышечно или подкожно. После введения в наркоз, кролика можно интубировать и, при необходимости, подключить к аппарату искусственного дыхания. Поддержание анестезии до 3 часов обеспечивается внутривенным введением смеси кетамин/ксилазин (10+2 мг/кг) .

Кетамин, ксилазин и ацепромазин.

Hobbs BA. et al. (1991) установили, что комбинация кетамин/ксилазин с ацепромазином предпочтительнее, если необходима продолжительная операция, в их исследовании период анестезии составлял 60-120 минут . Но эта комбинация при внутримышечном введении вызвала периневральное воспаление и фиброз у 4 кроликов из 6 в исследовании, проведенном в 1999 г. Vachon P. .

Медетомидин и кетамин.

Смесь медетомидин/кетамин в дозе 0,35 мг/кг + 5 мг/кг при внутривенном введении обеспечивает хирургический наркоз продолжительностью не менее 35 минут . Внутривенное введение атипамезола прекращает действие этих препаратов. Проведенные на кроликах исследования (Kim MS et al. 2004) показали, что оптимальными для реверсии наркоза являются равная или двойная доза атипамизола .

Кетамин, медетомидин и изофлюран.

Кетамин в дозе 15 мг/кг и медетомидин 0,25-0,5 мг/кг подкожно или внутримышечно в сочетании с изофлюраном 1,5-2,0% обеспечивают достаточную степень наркоза для проведения орхиэктомии и овариоэктомии. Подкожная инъекция переносится легче, но после внутримышечного введения индукция в анестезию происходит быстрее. Атипамезол является эффективным антагонистом, в дозе 0,5-1,0 мг/кг, быстрее действует при внутримышечном введении по сравнению с подкожным ускоряет восстановление кролика .

Кетамин и ксилазин с буторфанолом.

В исследовании Marini RP et al. (1992) кетамин/ксилазин в дозе 35 мг/кг+5 мг/кг применяли вместе с буторфанолом 0,1 мг/кг. Включение в эту комбинацию буторфанола продлевало анестезию в 1,4-1,6 раза с 77 до 99 мин. .

Медетомидин, кетамин и буторфанол с изофлюраном.

Сочетание медетомидина, кетамина и буторфанола используют для непродолжительных процедур, таких как подрезка резцов или рентгенография. Его также можно использовать для введения в анестезию перед применением ингаляционной анестезии при более длительных процедурах, таких как обработка коренных зубов, удаление резцов, в этих случаях необходима интубация, так как использование лицевой маски невозможно . Ингаляционную анестезию также рекомендуем при промывании слезного канала.

Медетомидин в дозе 0,2 мг/кг в сочетании с 10 мг/кг кетамина и 0,5 мг/кг буторфанола вводят подкожно. Это составляет 0,2 мл/кг Domitor (Pfizer), 0,1 мл/кг кетамина и 0,05 мл/кг Torbugesic (Fort Dodge). Инъекция обычно переносится болезненно, действие препаратов начинается через 5-10 минут и продолжается приблизительно 20 минут. Полное восстановление происходит за 2-4 часа .

В конце операции, действие медетомидина можно снять атипамезолом 1 мг/кг (0,1 мл/кг) (Antisedan (Pfizer). Период действия атипамезола составляет 15-40 минут. Анальгетическое действие медетомидина также снимается атипамезолом. Если не вводить атипемезол, восстановление после анестезии происходит через 1-2 часа.

Тилетамин/золазепам и ксилазин.

Dupras J. et al. (2001) изучили возможность использования комбинации тилетамин/золазепама в дозе 20 мг/кг в сочетании с ксилазином 3 мг/кг. при внутримышечном введении. Введение в анестезию продолжалось около 3 мин., продолжительность анестезии составила в среднем 109,4 мин. В связи со способностью ксилазина вызывать существенную гипоксию, исследователи указывают на обязательное обеспечение кролика кислородом .

Разина А.В и др. (2010) рекомендуют внутримышечное ведение рометара в дозе 4,0-6,0 мг/кг с последующим (через 20 мин.) внутримышечном введении тилетамин/золазепама в дозе 5-10 мг/кг. Через 5 мин. После внутримышечного введения золетила наступала полная релаксация мышц, отсутствовали корнеальный рефлекс и болевая чувствительность, зрачок расширялся. Анестезия продолжалась около 30 мин., через 1,5 часа кролик передвигался самостоятельно.

Таблица - Препараты и их сочетания, рекомендуемые для седации и анестезии кроликов

Препараты	Доза (мг/кг)	Действие	Способ применения	Продолжительность действия
ацепромазин		седация, не вызывает анальгезию
ацепромазин + буторфанол		седация и анальгезия
буторфанол + медетомидин + кетамин		анестезия		20-30 минут, восстановление 1-4 часа
кетамин + ксилазин		анестезия		30-40 минут, восстановление 1-2 часа
кетамин + ксилазин + буторфанол		анестезия		40-60 минут восстановление 1-2 часа
кетамин + ксилазин + ацепромазин		анестезия		25-40 минут, восстановление 1-2 часа
кетамин + ацепромазин		анестезия
кетамин + медетомидин		анестезия		не менее 35 минут
пропофол		гипнотическое		для поддержания анестезии 1,2-1,3 мг/кг/мин
ацепромазин + буторфанол + пропофол		седация и анальгезия		для поддержания анестезии пропофол 1,2-1,3 мг/кг/мин
тилетамин/золазепам + ксилазин		анестезия
ксилазин + тилетамин/золазепам		анестезия		30 мин, восстановление 1,5 часа

Таким образом, существующие в настоящее время препараты и возможность их использования в различных сочетаниях позволяют, в большинстве случаев, выбрать метод анестезии в соответствии с состоянием кролика, характером и продолжительностью запланированной операции. При этом значительную роль играет оборудование ветеринарной клиники и опыт врача.

Кандидат ветеринарных наук, доцент кафедры болезней птиц, рыб, пчел и пушных зверей фБгоу впо «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины», Центр ветеринарной медицины “Ветус”.

Литература
	Пламб, Дональд К. Фармакологические препараты в ветеринарной медицине // М., 2002.- 856 с.
	Разина А.В. Оптимизация метода общей анестезии на кроликах / А.В. Разина, А.И. Фролова, М.А. Сергеева //Актуальные вопросы ветеринарной биологии.- 2005.- №1(5).-С.32-35
	Baumgartner CM, Koenighaus H, Ebner JK, Henke J, Schuster T, Erhardt WD. Cardiovascular effects of fentanyl and propofol on hemodynamic function in rabbits // Am J Vet Res. 2009 Mar;70(3):409-17.
	Brammer DW, Doerning BJ, Chrisp CE, Rush HG. Anesthetic and nephrotoxic effects of Telazol in New Zealand white rabbits // Lab Anim Sci. 1991 Oct;41(5):432-5.
	Cooper, J.E. Anaesthesia of exotic species. In Manual of Aneasthesia for Small Animal Practice // (A.D.R. Hilbery, ed.). British Small Animal Veterinary Association. 1989. - 144 р.
	Chang C, Uchiyama A, Ma L, Mashimo T, Fujino Y. A comparison of the effects on respiratory carbon dioxide response, arterial blood pressure, and heart rate of dexmedetomidine, propofol, and midazolam in sevoflurane-anesthetized rabbits // Anesth Analg. 2009 Jul;109(1):84-9.
	Chen WH, Lee CY, Hung KC, Yeh FC, Tseng CC, Shiau JM. The direct cardiac effect of propofol on intact isolated rabbit heart // Acta Anaesthesiol Taiwan. 2006 Mar;44(1):19-23.
	Cruz FS, CarregaroAB, Raiser AG, Zimmerman M. Total intravenous anesthesia with propofol and S(+)-ketamine in rabbits // Vet Anaesth Analg. 2010 Mar;37(2):116-22.
	Dikmen B, Yagmurdur H, Akgul T, Astarci M, Ustun H, Germiyanoglu C. Preventive effects of propofol and ketamine on renal injury in unilateral ureteral obstruction // J Anesth. 2010 Feb;24(1):73-80.
	Doerning BJ, Brammer DW, Chrisp CE et al: Nephrotoxicity of Tiletamine in New Zealand White rabbits // Lab Anim Sci, 1992; 42(3):267-269.
	Dupras J, Vachon P, Cuvelliez S, Blais D. Anesthesia of the New Zealand rabbit using the the combination of tiletamine-zolazepam and ketamine-midazolam with or without xylazine // Can Vet J. 2001 Jun;42(6):455-60.
	Elsa A, Ubandawaki S. Ketamine anaesthesia following premedication of rabbits with vitamin C // J Vet Sci. 2005 Sep;6(3):239-41.
	Flecknell, P.A. The relief of pain in laboratory animals // Lab Anim., 1984; 18, 147-160.
	Flecknell, P.A. Anaesthesia // In Manual of Rabbit Medicine and Surgery. 2000; (P.A. Flecknell, ed.) pp 103-116.
	Flecknell, P.A., John, M., Mitchell, M. et al. Neuroleptanalgesia in the rabbit // Lab Anim., 1983; 17, 104-109.
	Fudickar A, Bein B. Propofol infusion syndrome: update of clinical manifestation and pathophysiology // Minerva Anestesiol. 2009 May;75(5):339-44.).
	Ghaffari MS, Moghaddassi AP, Bokaie S. Effects of intramuscular acepromazine and diazepam on tear production in rabbits // Vet Rec. 2009 Jan 31;164(5):147-8.
	Ghaffari MS, Moghaddassi AP. Effects of ketamine-diazepam and ketamine-acepromazine combinations on intraocular pressure in rabbits // Vet Anaesth Analg. 2010 May;37(3):269-72.
	Hellebrekers, L.J., de Boer, E.J., van Zuylen, M.A., Vosmeer H. A comparison between medetomidine-ketamine and medetomidine-propofol anaesthe- sia in rabbits // Lab Anim., 1997; 31, 58-69.
	Hobbs BA, Rolhall TG, Sprenkel TL, Anthony KL. Comparison of several combinations for anesthesia in rabbits // Am J Vet Res. 1991 May;52(5):669-74.
	Kim MS, Jeong SM, Park JH, Nam TC, Seo KM. Reversal of medetomidine-ketamine combination anesthesia in rabbits by atipamezole // Exp Anim. 2004 Oct;53(5):423-8.
	Marini RP, Avison DL, Corning BF, Lipman NS. Ketamine/xylazine/butorphanol: a new anesthetic combination for rabbits // Lab Anim Sci. 1992 Feb;42(1):57-62.
	Martinez MA, Murison PJ, Love E. Induction of anaesthesia with either midazolam or propofol in rabbits premedicated with fentanyl/fluanisone // Vet Rec. 2009 Jun 27;164(26):803-6.
	Mason D.E. Anesthesia, analgesia, and sedation for small mammals // In Ferrets, Rabbits and Rodents, Clinical Medicine and Surgery. (E.V. Hillyer, K.E. Quesenberry, eds). 1997. - pp 378-391.
	Murphi KL, Roughan JV, Baxter MG, Flecknell PA. Anaesthesia with a combination of ketamine and medetomidine in the rabbit: effect of premedication with buprenorphine // Vet Anaesth Analg. 2010 May;37(3):222-9. Epub 2010 Mar 10.
	Ohya M, Taguchi H, Mima M, Koumoto K, Fukae T, Uchida M. Effects of morphine, buprenorphine and butorphanol on airway dynamics of the rabbit // Masui. 1993 Apr;42(4):498-503.
	Orr HE, Roughan JV, Flecknell PA. Assessment of ketamine and medetomidine anaesthesia in the domestic rabbit // Vet Anaesth Analg. 2005 Sep;32(5):271-9.
	Portnoy, L.G., Hustead, D.R. Pharmacokinetics of butorphanol tartrate in rabbits // Am J Vet Res., 1992; 53, 541.
	Stephen J. Birchard, Robert G. Sherding - Saunders Manual of Small Animal Practice, Third Edition, 2005.- 2008 p.
	Vachon P. Self mutilation in rabbits following intramuscular ketamine-xylazine-acepromazine injections // Can Vet J. 1999 Aug;40(8):581-2.
	Wixson, S.K. Anesthesia and analgesia. In The Biology of the Laboratory Rabbit, Academic Press, 2nd edn. 1994 (P.J. Manning and D.H. Ringler, eds). pp 87-109.
	Yershov AL, Jordan BS, Fudge JM, Dubick MA. Influence of the mode of ventilation on ketamine/xylazine requirements in rabbits // Vet Anaesth Analg. 2007 May;34(3):157-63.
	Yu QJ, Zhou QS, Huang HB, Wang YL, Tian SF, Duan DM. Protective effect of ketamine on ischemic spinal cord injury in rabbits // Ann Vasc Surg. 2008 May-Jun;22(3):432-9.
	Zhu T, Pang Q, McCluskey SA, Luo C. Effect of propofol on hepatic blood flow and oxygen balance in rabbits // Can J Anaesth. 2008 Jun;55(6):364-70.

Многие владельцы переживают, как их любимец перенесет оперативное вмешательство, для которого необходим наркоз.

Риск анестезии у кроликов – ключевые факторы

Имеется много факторов, которые могут повлиять на риск анестезии у кроликов. Среди них особенно выделяются

• стрессы,
• ряд предшествующих заболеваний,
• гипоксия.

Благодаря клиническому осмотру перед процедурой можно установить текущее состояние животного. Взвешивание поможет рассчитать дозировку препаратов, вводимых зверькам. Благодаря современному оборудованию, качественному и точному расчету дозы и наблюдению удается максимально безопасно.

Предварительный клинический осмотр

Благодаря клиническому осмотру, удается установить общее состояние животного перед анестезией. Особи, находящие в шоке, гипотензии или дегитратированные, требуют пристального внимания – специалист вводит таким кроликам питательную жидкость внутривенным или внутрикостным методом.

У кроликов не возникает рвотного рефлекса, и в результате, можно производить анестезию практически . Уже в течение 1-2 часов в их ротовой полости не останется частиц еды, а в желудке будет достаточно места.

После анестезии животному требуется постоянный приток кислорода в легкие. Благодаря оксигенации, можно существенно снизить риски проявления гипоксии. Осуществить подачу воздуха можно путем кислородной маски, с помощью назальных или эндотрахеальных трубок и через канал, вставленный в глотку.

Благодаря эндотрахеальной интубации, у животных существенно снижается риск длительной задержки дыхания, и можно вводить кислород в легкие. Это позволит избежать смертности. Также, данная процедура, в случае осложнений, позволит произвести искусственную легочную вентиляцию.

Интубирование животных

Чтобы сделать интубирование кролику, важно учитывать анатомические особенности их трахеи, полости рта и носоглотки. учитывают малый объем легких и делают процедуру так, чтобы избежать гипоксии у зверька. В сравнении с брюшной областью, легкие этих животных очень маленькие – их объем равен не более 5-6 мл/кг. Благодаря движению диафрагмы, они дышат – легкие работают не за счет мышц межреберной части организма. В специалист следит, чтобы органы брюшка животного не давили на диафрагму.

Пульсоксиметр

В качестве элемента анестезиологического оборудования применяют пульсоксиметр. Идеальное место для его крепления – язык кролика. Но данные действия будут невозможными, если мордочка будет под кислородной маской. Четкий сигнал будет поступать с основания хвоста или паховых складок, но для этого потребуется выщипать шерсть. Также в качестве дополнительного оборудования используется ректальный зонд.